sábado, 19 de octubre de 2019

PRÁCTICA 6: TINCIÓN DE WRIGHT

18.10.19

OBJETIVO

Aprender dicha técnica y tinción ya que se utiliza para la tinción de células sanguíneas y de médula ósea.


FUNDAMENTO


Los colorantes tipo Romanowsky están formados por Azul de Metileno y sus derivados oxidados, colorantes básicos, y el colorante ácido Eosina.  



Los colorantes básicos se unen a los componentes ácidos de las células, ácidos nucleicos, gránulos en neutrófilos y proteínas ácidas que se tiñen de un color rojo púrpura mas o menos intenso.
La eosina se une a la hemoglobina, componentes básicos de las estructuras celulares y los gránulos de los eosinófilos.
El balance entre el azul de metileno y sus derivados oxidados  y entre estos y la Eosina, proporciona una tonalidad más o menos azul y una mayor o menor intensidad en la coloración, que son característicos de cada tipo de colorante Giemsa, May-Grünwald o Wright.

Material necesario:

  • Pipeta Pasteur
  • Paralelas
  • Cubeta de tinción
  • Microscopio

Reactivos:

  •  Colorante Wright (compuesto de Eosina-azul de metileno)   
Muestra:
  • Extensión de sangre que previamente realizamos en la práctica anterior


PROCEDIMIENTO:

La extensión, previamente hecha, secada al aire y sin fijar, se pone sobre unas paralelas y se cubre totalmente con 1 mL de colorante con ayuda de una pipeta Pasteur. Se deja actuar durante 5 min.
Posteriormente, se añade, gota a gota, 1 mL de solución salina soplando ligeramente con la pipeta para conseguir una mezcla homogénea.
Después se deja 5 minutos y se vierte el colorante, se lava con solución salina y se deja secar al aire.






OBSERVACIÓN MICROSCÓPICA

100 x, Zona del cuerpo.



ESQUEMA DEL PROCESO




PRÁCTICA 5: TINCIÓN DE MAY-GRÜNWALD GIEMSA

18.10.19

FUNDAMENTO

Los colorantes tipo Romanowsky están formados por Azul de Metileno y sus derivados oxidados, colorantes básicos, y el colorante ácido Eosina.

Los colorantes básicos se unen a los componentes ácidos de las células, ácidos nucleicos, gránulos en basófilos y proteínas ácidas que se tiñen de un color rojo púrpura más o menos intenso.

La Eosina se une a la hemoglobina, a los componentes básicos de las estructuras celulares y a los gránulos de los eosinófilos.

El balance entre el azul de metileno y sus derivados oxidados como la Eosina, proporciona una tonalidad más o menos azul y una mayor o menor intensidad en la coloración, que son característicos de cada tipo de colorante Giemsa, May-Grünwald o Wright.

Se utiliza para la tinción de células sanguíneas y de médula ósea, aunque algunos autores utilizan la coloración compuesta de May-Grúnwald Giemsa para la tinción de parásitos en sangre.

Material necesario:
  •  Probeta
  •  Pipeta pasteur
  • Pipeta de 10 mL
  • Paralelas
  • Cubeta de tinción
  •  Microscopio
Reactivos:
  • May- Grünwald (compuesto por eosina y azul de metileno en metanol).
  • Giemsa (diluido 1/10)
Muestra:
  • Extensión de sangre que previamente realizamos en la práctica anterior


PROCEDIMIENTO:

1. Dilución del giemsa

Nuestro grupo realizó la dilución del giemsa al 1/10, para ello lo que hicimos fue echar hasta cerca de la línea de enrase de la probeta solución salina, y cuando quedó poco enrasamos con ayuda de una pipeta Pasteur, colocándonos con la línea de enrase a la altura de los ojos.

Tras ello cogemos una pipeta de 10 mL y cogemos 10 mL de giemsa y lo vertimos en la probeta, homogeneizando después.
Luego lo guardamos en un frasco con gotero.






2. Tinción

La extensión, previamente hecha, se puso sobre unas paralelas y se cubre con 2 mL aproximadamente de May-Grünwald y se deja durante 3 minutos.

Luego vertimos el colorante inclinando el portaobjetos y seguidamente, sin lavar los cubrimos con el Giemsa diluido que acababamos de preparar.

Lo dejamos durante 15 minutos y lo lavamos con solución salina, dejándolo secar al aire 



OBSERVACIÓN MICROSCÓPICA


100x se observan neutrófilos y linfocitos


ESQUEMA DEL PROCESO:







lunes, 14 de octubre de 2019

PRÁCTICA 4: TINCIÓN DE PANÓPTICO RÁPIDO

DÍA 1: 14.10.19

OBJETIVO

Familiarizarnos con las tinciones, conocer los distintos tipos existentes, y saber cuál es el más adecuado a emplear según lo que estemos buscando.

FUNDAMENTO

Los colorantes Panóptico Rápido constituyen un sistema de tinción diferencial de los elementos formes de la sangre, que combina la policromía y calidad de los métodos clásicos (May Grünwald, Giemsa) con una gran rapidez de ejecución (tan solo unos segundos).

Reactivos:
  • A. Panóptico Rápido  Nº1. Composición: Disolución metanólica de colorante de triarilmetano
  1 x 500 ml  
  • B. Panóptico Rápido Nº2 Composición:  Disolución acuosa tamponada de xanteno 1 x 500 ml   
  • C. Panóptico Rápido Nº3 Composición:  Disolución acuosa tamponada de colorantes derivados de la tiazina
Muestra:
  • Extensiones con nuestra sangre capilar, que extendimos sobre portas en la práctica anterior.
PROCEDIMIENTO

Tras dejar secar al aire nuestras extensiones realizadas en la anterior práctica, preparamos un recipiente con los colorantes para cada grupo.

Seguidamente y con ayuda de unas pinzas sujetamos el portaobjetos y durante 5 segundos (5 inmersiones de  1 segundo) lo sumergimos en  la disolución  colorante Nº 1,  luego se escurre.
Luego se sumerge otros 5 segundos (5 inmersiones de 1 segundo) en la disolución colorante  Nº 2, escurrir de nuevo.
Y ya sumergir finalmente  otros 5 segundos (5 inmersiones de 1 segundo) en la disolución colorante  Nº 3.
  
Luego lo lavamos con agua del grifo y dejamos secar.

Ese día ya acabamos y guardamos todas las extensiones tanto tintadas como sin tintar en un estuche para portas 

Colorantes 1 2 y 3

Sumergiendo en colorante 1

Sumergir en colorante 2

Sumergir en colorante 3

Extensiones con tinción secándose



OBSERVACIÓN MICROSCÓPICA:


100x, se observa un linfocito



ESQUEMA DEL PROCESO:

PRÁCTICA 3: PREPARACIÓN DE EXTENSIONES

14.10.19

OBJETIVO

El objetivo de esta práctica es aprender a realizar correctamente una extensión sanguínea para luego realizarles las tinciones correspondientes, además aprendimos las partes de dicha extensión y la utilidad. De hecho también vimos los diferentes tipos celulares que podíamos encontrar en cada una de sus partes.

FUNDAMENTO

Una extensión o frotis sanguíneo consiste en recubrir parcialmente un portaobjetos con una gota de sangre de tal manera que las células de ésta se dispongan formando una sola capa de ellas.
 Es una técnica muy utilizada en hematología que nos permite obtener una información muy valiosa, tanto del la fórmula leucocitaria como del estudio de la morfología de las células.  

Material necesario:
  • Portaobjetos
  • Capilares con Heparina
  • Lanceta
Muestra:
  • Sangre capilar.
PROCEDIMIENTO:

Lo que hicimos fue obtener una muestra de sangre capilar de los compañeros, es decir, un compañero le puncionaba al otro y viceversa para así también practicar las punciones con lanceta.

1. Lo primero es que mi compañera se masajeó el dedo hacia abajo para que haya más sangre y seguidamente lo desinfecté con alcohol de 70º 
2. Realicé la punción con lanceta y acto seguido recogimos la sangre en un capilar heparinizado (ya que asciende por capilaridad)
NOTA: es muy importante el anticoagulante ya que si no, la sangre coagulará muy pronto
3. Luego se presiona el dedo un poco con el algodón
4. Segundos después debe echar una gota al portaobjetos y acto seguido coger otro y en un ángulo de 45 º se pone delante de la gota y lo dirige hacia ésta (sin cambiar el ángulo), ahora esperamos a que se manche de sangre la superficie de ese porta y acto seguido lo dirigimos hacia delante con paso firme y seguro, evitando desviaciones.
Tiene que quedar una superficie lisa, pareja y con flecos al final. Y también ser cada vez más delgada y acabar antes del extremo del porta.

NOTA: tuvimos que hacer muchísimas pruebas porque al no tener experiencia previa es algo difícil al inicio, además notamos que se quedaban retenidos los portas sobre los otros, por lo que decidimos enjuagar unos cuantos con agua y alcohol y luego lo secamos bien. Notamos que las siguientes extensiones se deslizaban más suavemente.
Tuvimos que puncionar varias veces para poder realizarlas correctamente.

Punción

Depositamos gota

Tocamos la gota con el porta y esperamos a que se impregne,
luego lo dirigimos hacia delante


Extensiones





lunes, 7 de octubre de 2019

PRÁCTICA 2: DETERMINACIÓN CUANTITATIVA DE HEMOGLOBINA

07.10.19

OBJETIVO

Aprender a medir la hemoglobina en sangre venosa, a través de técnicas espectrofotométricas. La hemoglobina es oxidada por la acción del ferricianuro a metahemoglobina y mediante el cianuro se convierte en cianmetahemoglobina.
La intensidad del color formado es proporcional a la concentración de hemoglobina presente en la muestra ensayada. Además la hemoglobina es una proteína que contiene hierro, otorga el color rojo a la sangre. Y es la encargada del transporte de oxígeno. Un valor por debajo del normal puede indicar: anemia primaria, cáncer, embarazo, enfermedades renales o hemorragias.
En cambio un nivel alto puede deberse a cardiopatías, deshidratación o estancia en lugares de gran altitud.

Material necesario:
  •  Espectrofotómetro.
  • Cubetas de 1 cm de paso de luz.
  •  Pipetas de 5 y 10 mL y auxiliares.
  •  Probeta
  •  Micropipeta de 10 µL y puntas.
  •  Gradilla
  • Tubos de ensayo
Reactivos: 
  •  Hemoglobin 50 x Drabkin, compuesto de ferricianuro de potasio, cianuro de potasio y dihidrogeno fosfato de potasio. 
  • Hemoglobin cal, que es el PATRÓN de hemoglobina, de origen animal con una concentración de 15 g/dL.
OTROS DATOS: Medir a 540 nm de longitud de onda.

Material
Reactivo y calibrador


PROCEDIMIENTO

Lo primero que tenemos que tener en cuenta es que vamos a realizar el método micro, en el que se establecen las siguientes medidas:



Además para elaborar el reactivo de trabajo (RT):

_Para 5 mL:  4,9 mL de agua destilada + 2 gotas de reactivo
_Para 250 mL: 245 mL de agua destilada + 5 mL de reactivo (1 frasco)

Como eramos varios grupos en clase, decidimos hacer solo nuestro grupo el blanco y el patrón que emplearía el mismo todos los compañeros.

Al ser 5 grupos y teniendo en cuenta las medidas de la tabla, nos propusimos a preparar 20 mL de RT para que tuviésemos todos los de la clase. Para ello y para que esté en la misma proporción que lo que establece el protocolo, debemos mezclar 19,60 mL de agua destilada + 8 gotas de reactivo

Cálculos realizados

Antes de nada, encendemos el espectrofotómetro.
Cuando ha pasado unos 10 minutos seleccionamos 540 nm de longitud de onda
1. Preparamos la gradilla con 2 tubos de ensayo.
2. Vertemos agua destilada en un vaso de precipitados y con una pipeta cogemos 19,6 mL y lo vertemos en una probeta.
3. Posteriormente echamos 8 gotas del reactivo en el agua de la probeta.
4. Mezclamos un poco.
5. Con la pipeta cogemos 2,5 mL de RT y lo echamos en uno de los tubos de ensayo. Este será el blanco
6. Seguidamente cogemos otros 2,5 mL de RT y se echa en el otro tubo, a continuación con una micropipeta se coge 10 µL de hemoglobin cal (calibrador) y se echa sobre el RT. Se homogeneiza con la micropipeta.
7. Tras ello cogimos otra gradilla con 5 tubos de ensayo y echamos 2,5 mL de RT en cada uno de ellos y solo en uno echamos 10 µL de muestra de sangre, antes se agita un poco y tras echarla sobre el RT se cierra con un tapón y se mueve levemente. Realizamos el mismo movimiento con el blanco y el patrón.
8. Los otros cuatro tubos se reparten a los otros grupos para que echen su cantidad de muestra correspondiente
9.  Vertemos el blanco, el patrón y la muestra en cubetas de espectrofotometría.
10. Ajustamos el blanco, para ello seleccionamos medir blanco, limpiamos la cubeta y sin tocar con los dedos por abajo la metemos en la posición correcta en el compartimento para ello. Cerramos y se ajustará el blanco. Es importante colocarlo de forma que el haz de luz no incida sobre las caras opacas.
11. Tras ello sacamos el blanco y con el mismo método metimos el patrón. Se obtuvo 1,028 de absorbancia.
12. Se realizó lo mismo pero con la muestra y se obtuvo 2,084 de absorbancia.


Agua destilada


RT preparado

Preparando el tubo de blanco

Blanco y patrón

Añadiendo muestra

Tubos para toda la clase


Cubetas

Blanco ajustado

Metiendo el blanco

Absorbancia del patrón

Absorbancia de la muestra

Tras ello y con la siguiente fórmula se obtiene la concentración:

(Absorbancia de la muestra/Absorbancia del patrón) *15 = 30.41 g/dL

Tras tener este dato lo comparamos con los valores de referencia:
  • Hombres: 14 - 18 g/dL
  • Mujeres: 12 - 16 g/dL

OBSERVACIONES
  • La medición obtenida fue demasiado alta por lo que podría deberse a que la sangre la teníamos en el laboratorio y llevaba más de un año extraída, cuando en condiciones normales como mucho se habría de esperar unos días máximo.
  • No es necesario ajustar el blanco en los siguientes grupos una vez que ya lo ajustamos nosotros.
  • Teníamos esa sangre en el laboratorio, pero debe obtenerse sangre por punción venosa y se usan anticoagulantes como EDTA, heparina u oxalato.


PRÁCTICA 21: TBIC

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