lunes, 10 de febrero de 2020

PRÁCTICA 15: DETERMINACIÓN CUANTITATIVA DE FIBRINÓGENO

10.02.2020

PRINCIPIO DEL MÉTODO

El Fibrinógeno, en presencia de un exceso de trombina, se transforma en Fibrina.  El tiempo de formación del coágulo es inversamente  proporcional a la concentración de Fibrinógeno presente en la muestra de plasma. La determinación de fibrinógeno por el tiempo de coagulación de trombina, está basada en el método descrito por Clauss. 
En presencia de altas concentraciones de trombina, el tiempo necesario para la formación del coágulo en el plasma diluido es inversamente proporcional a la concentración de fibrinógeno.


SIGNIFICADO CLÍNICO 



El Fibrinógeno (Factor I), proteína sintetizada en el hígado, es un componente de la sangre utilizado para formar el coágulo. Su determinación nos ayuda a evaluar las alteraciones en los mecanismos de coagulación.  La concentración de fibrinógeno se incrementa en inflamaciones agudas y embarazo; por el contrario se observan valores bajos en  terapias trombolíticas, enfermedades hepáticas, disfibrinogenia congénita, DIC (Coagulación intravascular diseminada) y  pancreatitis.

REACTIVOS 

R 1 Trombina bovina                             100 u NIH/mL
 R 2 Tampón Imidazol, Azida sódica                    
R3 Solución Caolín   
                   
Opcional
COAGULATION  CAL            REF: 1709101 CONTROL NORMAL             REF: 1709104 CONTROL PATHOLOGIC     REF: 1709106


MATERIAL 

Coagulómetro 
Micropipetas y puntas
Gradillas
Tubos eppendorf
 
MUESTRAS  Plasma obtenido por punción venosa diluido 1/10 




PROCEDIMIENTO

Lo primero que hicimos fue reconstituir el R1 en 2,0 mL de agua destilada. Luego tapamos y mezclamos suavemente hasta disolver su contenido, y lo dejamos reposar 15 minutos.
El R2 lo agitamos antes de usar. 
R3: Listo para su uso.





1. Preparamos una dilución 1/10 de la muestra y los Controles en Tampón Imidazol:  50 µL de muestra o control + 450 µL de R2 (tampón imidazol).



2. Luego un grupo de clase se encargó de preparar las siguientes diluciones del  Calibrador  en Tampón Imidazol: (con la construcción de su correspondiente curva de calibración.


3. Luego  traspasamos a otro tubo eppendorf 0,2 mL de cada dilución y añadimos 20 µL de R3 y atemperar a 37ºC durante 5 minutos en el coagulómetro, previamente le hemos introducido en la cubeta la varilla de metal.




4. Añadimos 0,1 mL de reactivo R1, con previa inserción de la cubeta y pulsado RESET. Tras caer el R1 empieza a correr el tiempo hasta parar en la formación de coágulos.



Nuestros valores obtenidos fueron:

Muestra: 17,2 segundos
Normal: 28,2 segundos
Patológico: 32,4 segundos

CÁLCULOS 

1. Calcular la media de los duplicados de los tiempos de coagulación, inmediatamente después de finalizar la reacción. Utilizar los cinco puntos del calibrador para crear una curva de los tiempos obtenidos frente a los valores de concentración de Fibrinógeno de cada dilución del  Calibrador (mg/dL).
2. Trazar la mejor curva. Examinar la curva y, si es necesario, omitir los puntos no lineales. La curva final debe constar de tres puntos consecutivos como mínimo. La creación de la curva sólo con los puntos más lineales producirá la mejor recuperación en los controles y las muestras de paciente.


4 La concentración de Fibrinógeno en la muestra se calcula por interpolación de su tiempo de coagulación en la curva de calibración.
5. Si los tiempos de dilución 1/10 se encuentran fuera de la curva lineal, preparar diluciones a 1/5 ó 1/20, según sea necesario. Si la muestra se diluye a 1/5 dividir el resultado de la curva por 2; si la muestra se diluye a 1/20, multiplicar el resultado por 2 para obtener el resultado final.

RESULTADO:

Además de por interpolación también se puede hacer por la fórmula de la gráfica que nos proporciona excell que nos dará un resultado bastante más preciso, los resultados fueron:

La función es  y= -0,1169 X + 56,108
Para el suero normal → Tiempo = 28,2s
x = (28,2-56,108) / (-0,1169) = 238,73 mg/dL

Para el suero patológico → Tiempo = 32,4s
x = (32,4-56,108) / (-0,1169) = 202,8 mg /dL

Para nuestra muestra → Tiempo = 17,2s
x = (17,2-56.108) / (-0,1169) = 332,83 mg/dL

sábado, 1 de febrero de 2020

PRÁCTICA 14: DETERMINACIÓN CUANTITATIVA DEL TIEMPO DE PROTOMBINA

31.01.2020

PRINCIPIO DEL MÉTODO  
Basado en el test de A. Quick, el ensayo mide el tiempo transcurrido hasta la formación del coágulo después de la mezcla del plasma con Tromboplastina (un extracto de tejido rico en Factor Tisular, fosfolípidos y calcio). La coagulación se inicia por activación del FVII con el Factor Tisular. 

Material necesario:
  • Coagulómetro
  • Micropipetas y puntas
  • Baño termostático

Reactivos:
PT : Tromboplastina de cerebro de conejo, cloruro cálcico, inhibidor de heparina, tampón y conservantes. Liofilizado.  MUESTRAS Plasma previamente separado y contenido en citrato trisódico.

PROCEDIMIENTO

Encendemos el coagulómetro.
Lo primero que hicimos fue reconstituir el contenido de un vial con 4 mL de agua destilada, luego tapamos el vial y agitamos hasta disolver el contenido evitando la formación de espuma
Luego precalentamos a 37 º C el reactivo PT y la muestra durante 7 minutos. 
Introducimos en una cubeta del coagulómetro la varilla de metal, y seguidamente iniciamos el test PT mezclando 200µl de PT con 100µl de plasma citrado precalentado. Para ello se deposita primero el reactivo, se pone la cubeta debajo de la tapadera, se pulsa el botón RESET y se echa seguidamente la muestra a través del agujero de la tapadera, una vez depositado automáticamente empieza a contar el tiempo transcurrido en el momento de la mezcla. Detener en el momento de la formación del coágulo.  El resultado fue 12,9.




RESULTADOS 
Los valores se pueden expresar en segundos, en Tasa de PT (PR,  comparando con un valor de referencia), porcentaje de actividad (%, con curva de calibración utilizando un plasma (pool o liofilizado) de referencia),  o en tasa internacional normalizada (INR): 

INR: ( PT (seg)/PT referencia (seg)) ^ISI

El ISI (Indice de Sensibilidad Internacional) depende del lote de reactivo y del sistema analítico utilizado. Spinreact indica para cada lote de reactivo PT un valor de ISI genérico para detección foto-óptica del coágulo.

VALORES DE REFERENCIA 
Utilizando el coagulómetro BioBas10, a partir de 20 muestras normales se determinó el rango de referencia (95% confianza): 11,1-14,3 segundos.

Tiempo de protombina normal : 14 ISI: 1.26 Realizando la fórmula descrita arriba el resultado fue de 1, por lo que el tiempo de protombina de dicho paciente es patológico.



lunes, 27 de enero de 2020

PRÁCTICA 13: TIEMPO DE SANGRÍA

27.01.2020

OBJETIVO

Determinar el periodo de tiempo desde que se realiza una pequeña  incisión en la piel y el momento en que finaliza el sangrado. (Tiempo de sangría), vamos a usar dos métodos, el Ivy y Duke.

FUNDAMENTO

Es la única prueba que permite medir in vivo la reacción plaqueta-endotelio y demuestra la capacidad
hemostática de las plaquetas. Se usa la técnica de Ivy que consiste en practicar una  incisión en la cara anterior de antebrazo mediante una hoja especial de 1 cm de  longitud y 1 mm de profundidad.
El tiempo de hemorragia normal es entre 3 minutos y 30 segundos, y 8 minutos y  30 segundos. Las causas de prolongación del tiempo de sangría son las alteraciones en la pared vascular, trombocitopenias, defectos en la agregación o adhesión plaquetar.

Material necesario:
  • Cronómetro
  • Papel de filtro
  • Lanceta
  • Algodón
  • Alcohol de 70º


PROCEDIMIENTO

Método Ivy:

En él determinamos el tiempo de sangría usando la técnica en el antebrazo, primeramente usamos un xxxx y lo pusimos a una presión de 40, luego desinfectamos la zona con algodón y realizamos la punción con lanceta, es importante no realizar la punción donde no haya venas ni vello.
Seguidamente ponemos el cronómetro y retiramos la sangre con un papel de filtro cada 30 segundos sin tocar el brazo (por capilaridad) y vamos realizando esto cada 30 segundos hasta que deje de sangrar.
Una vez acabado anotamos el tiempo, en mi caso fue de 1 minuto y 44 segundos.

Valores normales: entre 3,5 min - 8,5 min.

NOTA: El tiempo fue menor en nuestro caso debido a que la lanceta que utilizamos era de menor calibre que la que se suele usar en la técnica normalmente.






Método Duke

Este método utiliza el tiempo de sangría realizando una punción en el lóbulo de la oreja donde realizamos la desinfección con alcohol y un algodón, luego pusimos un portaobjetos detrás para tener soporte y realizamos la punción con la lanceta, luego se procede de la misma manera que con el método Ivy, quitando la sangre cada 30 segundos. El resultado fue de 1 minutos y 34 segundos.






viernes, 17 de enero de 2020

PRÁCTICA 12: DETERMINACIÓN CUANTITATIVA DEL TIEMPO DE TROMBOPLASTINA PARCIAL ACTIVADA (APPT)

17.01.2020

OBJETIVO

Medir el tiempo de tromboplastina parcial activa, que es una prueba que se suele realizar junto con el tiempo de tromboplastina y el fibrinógeno antes de someter a un paciente a una intervención quirúrgica.

PRINCIPIO DEL MÉTODO

 Los factores intrínsecos de la coagulación se activan en presencia de  un complejo fosfolipídico y un activador soluble en plasma citratado; se mide el tiempo transcurrido después de la adición del cloruro cálcico  (CaCl2) hasta la formación del coágulo de fibrina

SIGNIFICADO CLÍNICO

La medida del tiempo de APTT, es la determinación más común junto con la PT, sirve para determinar trastornos de la coagulación y es particularmente sensible a los defectos de la coagulación intrínseca (Factores VIII, IX, XI, XII). Se usa normalmente para la monitorización de las terapias anticoagulantes con heparina. El diagnóstico clínico debe realizarse teniendo en cuenta todos los datos clínicos y de laboratorio.

Material necesario:
  • Coagulómetro
  • Pipeta de 100 µL y puntas.
Reactivos:

R1: ácido elágico. Tampón y conservantes
R2: cloruro cálcico

Muestra: plasma con citrato (no EDTA)




PROCEDIMIENTO:

Encender el coagulómetro y mientras atemperar los reactivos y muestra, primero se coloca con ayuda de unas pinzas una varilla de metal en el interior del tubo, seguidamente se coloca en el tubo del coagulómetro 100 µL de muestra con 100 µL de R1 y esperar 5 minutos para que se atempere, seguidamente se pone el tubo bajo la pequeña tapadera del coagulómetro y se tapa, pulsamos el botón reset y le echamos 100 µL de R2, y empezará a automáticamente a contar el tiempo, se paró en 65.1 segundos con lo que podemos concluir que es un resultado patológico. Según la fórmula la tasa de APPT es la siguiente:

Tasa APPT = APTT presente/ APPT de plasma normal = 65.1/28.6 = 22,8%









lunes, 2 de diciembre de 2019

PRÁCTICA 11: DETERMINACIÓN DE COOMBS INDIRECTO

02.12.19

OBJETIVO

El objetivo es investigar la presencia de Ac irregulares o incompletos en el suero del paciente enfrentándolos, primero a hematíes específicos tipados y luego a la AGH para su detección.

FUNDAMENTO

El Test de Coombs indirecto tiene como objetivo determinar la presencia de Ac libres presentes en el plasma.

Material necesario:

  • Micropiipetas y puntas
  • Pipeta pasteur
  • Visualizador
  • Baño termostatico
  • Gradilla
  • Tubos de ensayo

Reactivos:

  • AGH y SF
  • Hematñies tipados del grupo O+
Muestra:
  • Suero problema


PROCEDIMIENTO

En primer lugar habría que preparar los hematíes tipados O+ pero esto ya lo hemos realizado en la anterior práctica. En donde se realiza una determinación de grupo celular sobre los hematíes tipados O+ para comprobarlo, se efectua el lavado y dilución de hematíes al 5% y se realiza el Coombs directo.

 Por lo que pasamos directamente a la determinación de Coombs indirecto.

Para ello en un tubo de ensayo se depositan 3 gotas del suero problema (este suero nos lo aportó el profesor, ya que no queremos realizarlo con suero y hematíes de la misma persona).
Luego se añade a dicho tubo 3 gotas de la suspensión de hematíes tipados O+ al 5% y se agita de forma suave.
Luego se incuba en el baño unos 15 minutos pero nosotros lo hicimos en 5 minutos porque no daba tiempo porque se acababa nuestra hora de clase.
Se ava la mezcla con 1 mL de SSF, para ello centrifugamos 2500 rpm 1 minuto y quitamos el sobrenadante.
Al sedimento que obtenemos le dimos golpecitos en el fondo del tubo y vemos como había aglutinación, pero procedimos a verlo mejor en el visualizador.

Suero problema

Añadiendo hematíes al suero

Quitando sobrenadante

Añadiendo AGH




PRÁCTICA 10: DETERMINACIÓN DE COOMBS DIRECTO EN TUBO

02.12.2019

OBJETIVO

Determinar si existen o no Ac irregulares o incompletos fijados en la membrana de los hematíes del paciente enfrentando éstos al reactivo de Coombs específico para ello.

FUNDAMENTO

El suero de Coombs contiene la AGH (inmunoglobulina humana) que actúa creando puentes entre el Ag - Ac lo que permite visualizar la aglutinación.

Material necesario:

  • Micropipeta y puntas
  • Gradilla
  • Tubos de ensayo
  • Pipeta Pasteur
  • Centrífuga 
  • Visualizador


Reactivos

  • AGH 
  • SSF
  • Hematíes control sensibilizados con IgG.


PROCEDIMIENTO

Lo primero a realizar va a ser un lavado de hematíes, donde vamos a coger hematíes de nuestra muestra y lo depositamos en un tubo de ensayo y se le añade SSF casi hasta enrasar el tubo. Seguidamente lo pusimos a centrifugar 2500 rpm 1 minuto y además tuvimos que equilibrar la centrífuga con un tubo con agua destilada pues éramos el único grupo que la pusimos. 
Sacamos el tubo y retiramos el sobrenadante con una pipeta pasteur y volvimos a enrasar con solución salina y a centrifugar.
Cuando acabó le quitamos de nuevo el sobrenadante y realizamos una dilución al 5%, para ello echamos en otro tubo de ensayo 50 μL de hematíes y 950 μL de solución salina.
Tras esto le añadimos 10 gotas de anti-D.
Seguidamente depositamos 3 gotas de AGH en otro tubo y situamos en éste 3 gotas de hematíes de la muestra problema y agitamos de forma suave.
NOTA: Es importante ir rotulando adecuadamente que contiene cada tubo para evitar confusiones. 
Luego centrifugamos a 2500 rpm 1 minuto y resuspendimos el sedimento de hematíes dando golpes en el fondo del tubo




Tubo con muestra y otro con agua destilada para 
equilibrar la centrífuga

AGH 



LECTURA DE RESULTADOS

Se pudo observar con ayuda del visualizador la presencia de aglutinación. Por lo que es positivo. Se pueden apreciar grumos oscuros rojos que flotan en el líquido.




PRÁCTICA 9: CONFIRMACIÓN DEL GRUPO SANGUÍNEO A,B y D, combinado con la determinación de Ac irregulares.

02.12.19

OBJETIVO

Detectar por medio de esta prueba la existencia de Ac irregulares presentes en el suero del paciente. Proporciona un alto nivel de seguridad para cada paciente individual que necesite una transfusión.

FUNDAMENTO

La tarjeta ID-DiaClonType está concebida para la confirmación del grupo sanguíneo ABO y Rh del receptor y verificar la presencia de Ac irregulares con la prueba de antiglobulina indirecta

Material necesario:

  • Gradilla
  • Tubo de ensayo
  • Micropipeta y puntas
  • Centrífuga 
  • Baño termostático
Reactivos:
  • ID-Diacell I-II-III para el escrutinio de Ac
  • Solución salina
Muestra:
  • Sangre anticoagulada con EDTA



PROCEDIMIENTO:

Preparación de la muestra:

Primero preparamos la suspensión de hematíes al 5% de tal forma que depositamos 500 μL de solución salina y agregamos 25 μL de suspensión de hematíes. Los hematíes los obtuvimos porque previamente separamos el plasma en otro tubo y dejamos ahí solo los hematíes. Tras esto se mezcla con cuidado.







Procedimiento:

Se identifica la tarjeta con el nombre del paciente y retiramos con cuidado la lámina de sellado de los primero 3 tubos y pipeteamos 12,5 μL de suspensión de hematíes en los 3 primeros tubos.
Luego retiramos la lámina de sellado de los tubos 4, 5 y 6 y se pipetean 50 μL de ID-Diacell I, II y III respectivamente. Estos reactivos son hematíes, además luego se le agregó 25 μL de plasma en los tubos 4, 5 y 6. Luego se puso durante 15 minutos la tarjeta en el baño termostático a 37ºC y transcurrido ese tiempo se puso en la centrífuga específica para tarjetas durante 10 minutos.


LECTURA DE RESULTADOS

Cuando terminó observamos la tarjeta y vimos que el paciente solo aglutinó en el Rh correspondiente al Ag D por lo que sabemos que es 0+ y que no posee Ac irregulares en su plasma.


OBSERVACIONES

Finalmente se incubó en el baño un poco más de ese tiempo debido a que había otros grupos de clase que aún le faltaban minutos y teníamos que poner el mayor numero posible de tarjetas en la centrífuga especial de tarjetas.


Vemos que solo aglutina en el DVI-

PRÁCTICA 21: TBIC

24.02.2020 PRINCIPIO DEL MÉTODO    La transferrina sérica se satura con un exceso de Fe3+ y el exceso no fijado se elimina por precipi...